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结直肠癌细胞中NF-κB活化与TRAF6、CCR5及PTEN/PI3K通路的关系及作用

  • 何亚琴 1
  • 苏进达 2
  • 赵少辉 2
  • 王健 3
  • 谢小亮 3
1. 宁夏医科大学总医院,外科学研究室,宁夏 银川 750004; 2. 宁夏医科大学总医院,结直肠外科,宁夏 银川 750004; 2. 宁夏医科大学,宁夏 银川 750004

中图分类号: R735.3

最近更新:2022-10-31

DOI:10.7659/j.issn.1005-6947.2022.10.012

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摘要

背景与目的

NF-κB的活化在多种恶性肿瘤的发生、发展中起了重要的作用。研究发现,趋化因子受体5(CCR5)、肿瘤坏死因子受体相关因子6(TRAF6)以及PTEN/PI3K通路相关蛋白均在恶性肿瘤中异常表达。因此,本研究探讨以上分子在结直肠癌细胞中的作用及相互关系。

方法

分别用Western blot、CCK-8实验、Transwell法检测结直肠癌HT29和SW480细胞经Maraviroc(CCR5抑制剂)、MG132(TRAF6抑制剂)和NF-BAY(NF-κB抑制剂)处理后,各蛋白表达的变化,以及增殖、迁移、侵袭能力的变化。

结果

在两种结直肠癌细胞中,抑制CCR5蛋白后,PI3K的表达降低,PTEN表达升高(均P<0.05),TRAF6和NF-κB表达无明显变化(均P>0.05);抑制TRAF6蛋白后,PI3K和CCR5表达降低,PTEN表达升高(均P<0.05),NF-κB的表达无明显变化(均P>0.05);抑制NF-κB表达后,CCR5、TRAF6和PI3K表达降低,PTEN表达升高(均P<0.05)。三种抑制剂均可明显降低两种结直肠癌细胞的增殖、迁移和侵袭能力(均P<0.05)。

结论

结直肠癌细胞中存在NF-κB异常活化,后者可能通过上调TRAF6与CCR5的表达,抑制抑癌分子PTEN的活性,从而导致促癌分子PI3K及其通路的活性升高。

结直肠癌是全世界最常见的癌症之一,是癌症死亡的主要原[

1]。肠癌患者在诊断时,根据临床分期系统(Ⅰ~Ⅳ)进行分层,据统[2],约有20%~25%的结肠癌患者患有转移性疾病,另有25%的患者在随访期间会发生转移。因此,迫切需要寻找精确的生物标志物,改善诊断、预防和治疗癌症手段,提高患者生存率。

核因子κB(nuclear kappa B,NF-κB)异常激活是肠癌恶性肿瘤中最重要的病因之[

3]。激活的NF-κB导致亚单位p65结合DNA能力增强,并诱导炎症、细胞增殖、癌细胞增殖[4]。NF-κB作为炎症的主要调节因子,在不同癌症中发现NF-κB的多个靶基因表达严重失调。Xu[5]研究发现罗伯酸(roburic acid)以高亲和力直接与肿瘤坏死因子结合,强力阻断NF-κB信号传导,进而抑制肿瘤生长。Bakshi[6]报道体外试验发现西红花苷可抑制NF-κB活化,降低血管生成和肿瘤生长和转移。因此,NF-κB信号通路在结直肠癌发生、发展过程中发挥关键作用,本研究探讨NF-κB信号在结直肠癌进展中调控机制。

近来研[

7]表明,趋化因子广泛应用于诊断和治疗癌症的生物靶点,趋化因子受体5(chemokine receptor 5,CCR5)及其配体构成趋化因子网络重要调控轴,并介导多种生理功能及恶性肿瘤相关的其他功能。肿瘤坏死因子受体相关因子6(tumor necrosis factor receptor-associated factor 6,TRAF6)通过泛素化和激活下游通路引起促炎因子的释放,在癌症进展中具有关键作[8]。磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)信号通路在细胞生长和增殖中起着决定性作用,结肠癌中编码激活、终止或转导PI3K信号的基因在体细胞中发生异常突变,而且PI3K磷酸化异常过度表达,促进结直肠癌细胞生长和增[9]。磷酸酶和张力蛋白同源物(phosphatase and tensin homolog,PTEN)是人类癌症中最常见的突变肿瘤抑制基因之一,PTEN基因的消融会加速多种人类癌症的进展,PTEN在多种生物学过程中发挥关键作用,包括细胞代谢、细胞运动、基因组维持和细胞衰[10]。上述研究发现表明CCR5、PI3K、TRAF6、PTEN是肿瘤进展关键调控信号,但其在结直肠癌发生发展过程中作用机制尚不清晰,因此,本研究利用NF-κB、TRAF6、CCR5抑制剂处理HT29和SW480细胞,探讨各关键蛋白表达对结肠癌细胞中的作用及其之间的相互联系,以期阐明影响结肠癌发生、发展的相关信号通路。

1 材料与方法

1.1 试验细胞

HT29和SW480细胞来自中国科学院细胞研究所。

1.2 试验试剂

兔抗人NF-κB单克隆抗体、兔抗人TRAF6单克隆抗体、兔抗人CCR5单克隆抗体、兔抗人PI3K单克隆抗体,兔抗人PTEN单克隆抗体以及羊抗兔二抗购自美国Abcam公司。CCK-8试剂盒购自MedChemExpress(cat: No. HY-K0301)公司,Transwell小室和Matrigel胶购自康宁公司。

1.3 试验方法

1.3.1 细胞分组

人结直肠癌细胞系HT29和SW480在DMEM培养基中培养,添加10% FBS,在37 ℃,5% CO2培养箱中培养。分别利用Maraviroc(250 nmol/L)、MG-132(50 μmol/L)、NF-κB抑制剂NF-BAY(90 μmol/L)与HT29细胞孵育0、12、24、48 h,取对应细胞分析相应指标。利用Maraviroc(300 nmol/L)、MG-132(70 μmol/L)、NF-BAY(140 μmol/L)与SW480细胞孵育0、12、24、48 h,取对应细胞分析相应指标。

1.3.2 Western blot

利用RIPA缓冲液获得全细胞蛋白提取物,EZQ蛋白定量试剂盒(Invitrogen)进行定量分析。使用预制Mini-PROTEAN TGX无染色凝胶(Bio-Rad)通过SDS-PAGE分离蛋白提取物,并使用Trans-Blot Turbo转移系统将蛋白印迹到聚偏二氟乙烯膜(PVDC)上。用含5%牛血清白蛋白或脱脂奶粉的TBS-T封闭膜,然后分别用兔单克隆抗NF-κB(1∶1 000)、TRAF6(1∶1 000)、CCR5(1∶1 000)、PI3K(1∶1 000)、PTEN(1∶1 000)孵育过夜。以兔单克隆抗β-actin(1∶1 000)作为上样对照。联合辣根过氧化物酶结合的羊抗兔IgG与增强化学发光系统、ChemiDoc MP 成像系统显示条带。分析各组细胞中蛋白表达水平。

1.3.3 细胞增殖检测

CCK-8试验(Cell Count Kit-8 SAB biotech)用于细胞增殖检测。按照生产商的方案,将细胞以每孔1.0×105个细胞的密度接种到6孔板中,在添加5%FBS的培养基中孵育24 h,并在37 ℃、5% CO2条件下孵育。转染后24 h,用胰蛋白酶消化细胞,一式三份接种到96孔板中(3×104个细胞/孔)。每孔用10 μL/孔的细胞计数试剂盒8溶液孵育2 h,每天孵育5 d。在酶标仪上测定450 nm处的光密度。进行了3次独立实验。

1.3.4 细胞迁移和侵袭检测

将细胞铺板于含有2% FBS的Transwell细胞培养小室或Transwell Matrigel™侵袭室顶室中,下室置于含5% FBS作为化学引诱物的培养基中。细胞在37 °C、5% CO2的潮湿环境中孵育24 h或48 h。下表面迁移的癌细胞用95%酒精固定,并用0.1%结晶紫(Solarbio)染色。在相差显微镜下计数侵袭细胞数并拍照(放大100倍)(每孔4个随机视野)。

1.4 统计学处理

采用SPSS 17.0分析软件和Graphpad Prism 8对数据进行统计分析、制图,数据采用均数±标准差(x¯±s)表示,组间采用t检验,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 抑制CCR5细胞蛋白表达变化

用CCR5抑制剂(Maraviroc)处理HT29和SW480细胞0、12、24、48 h后,Western blot分别检测各组细胞中CCR5、PTEN、NF-κB、TRAF6和PI3K蛋白的表达变化。结果显示,在Maraviroc处理后,随时间延长,HT29和SW480细胞中CCR5和PI3K蛋白的表达呈逐渐降低趋势,而抑癌蛋白PTEN表达呈升高趋势(部分P<0.05),但NF-κB和TRAF6的表达无明显变化(均P>0.05)(图1)。

图1  CCR5抑制剂处理细胞后蛋白表达变化 1)与0 h比较,P<0.05

Figure 1  Changes in protein expressions after treatment of CCR5 inhibitor 1) P<0.05 vs. 0-h value

2.2 抑制TRAF6细胞蛋白表达变化

用TRAF6抑制剂(MG132)处理HT29细胞和SW480细胞0、12、24、48 h后,Western blot分析细胞中CCR5、PTEN、NF-κB、TRAF6和PI3K蛋白表达水平,结果显示,MG132处理后,随时间延长,HT29和SW480细胞中TRAF6、PI3K和CCR5表达基本呈逐渐降低趋势,而PTEN表达呈升高趋势(部分P<0.05),NF-κB表达无明显变化(均P>0.05)(图2)。

图2  TRAF6抑制剂处理细胞后蛋白表达变化 1)与0 h比较,P<0.05

Figure 2  Changes in protein expressions after treatment of TRAF6 inhibitor 1) P<0.05 vs. 0-h value

2.3 抑制NF-κB细胞蛋白表达变化

用NF-BAY处理HT29和SW480细胞0、12、24、48 h后,Western bolt分析细胞中CCR5、NF-κB、PTEN、TRAF6和PI3K蛋白的表达,结果显示,NF-BAY处理后,随时间延长,HT29和SW480细胞中CCR5、NF-κB、TRAF6、PI3K蛋白表达基本呈逐渐降低趋势,而PTEN表达呈上调趋势(部分P<0.05)(图3)。

图3  NF-κB抑制剂处理细胞后蛋白表达变化 1)与0 h比较,P<0.05

Figure 3  Changes in protein expressions after treatment of NF-κB inhibitor 1) P<0.05 vs. 0-h value

2.4 不同抑制剂处理对细胞增殖的影响

CCK-8分析不同抑制剂处理后,HT29和SW480细胞增长的变化,结果显示,与处理24 h比较,抑制剂处理48 h后HT29和SW480细胞增殖明显抑制(均P<0.05)(图4)。

图4  CCK-8分析细胞增殖

Figure 4  Proliferation analysis by CCK-8 assay

2.5 不同抑制剂对细胞迁移和侵袭能力的影响

利用CCR5抑制剂(Maraviroc)、TRAF6抑制剂(MG132)以及NF-κB抑制剂(NF-BAY)处理HT29和SW480细胞,Transwell小室试验结果显示,与对照组比较,Maraviroc、MG132以及NF-BAY处理后HT29和SW480细胞迁移和侵袭能力均明显降低(均P<0.05)(图5)。

图5  Transwell分析细胞迁移和侵袭能力  1)与对照组比较,P<0.05

Figure 5  Determination of cell migration and invasion abilities by Transwell assay  1) P<0.05 vs. control group

3 讨 论

结直肠癌是全世界最常见癌症之一,早期诊断识别可尽早手术治疗并改善患者预后,降低结直肠癌病死[

11]。结肠镜检查是结直肠癌筛查金标准,具有高敏感度和特异度,但对操作人员、设备和资金方面有一定高要求。目前,先进的分子技术对大肠癌检查和治疗是重大突破,据报[12],蛋白质、DNA、RNA、肠道微生物结构等已逐步成为大肠癌变的生物标记物。

本研究结果表明,Maraviroc抑制HT29和SW480细胞中CCR5蛋白后,显著降低PI3K的表达,不影响TRAF6和NF-κB的表达,促进PTEN的表达;利用MG132抑制细胞中TRAF6蛋白后,可显著降低PI3K和CCR5的表达,而不影响NF-κB的表达,促进PTEN表达;抑制NF-κB表达后,可显著降低CCR5、TRAF6和PI3K表达,并促进PTEN表达。抑制该信号通路中CCR5、TRAF6和NF-κB蛋白,可降低癌细胞增殖、迁移和侵袭能力。综上,推测结直肠癌细胞中NF-κB通过调控TRAF6/CCR5/PI3K信号通路,最终调节PTEN的表达在结直肠癌进展中发挥作用。

NF-κB信号通路调控不同的蛋白及下游分子的在免疫、炎症、细胞生长、细胞存活和凋亡过程中发挥重要作用。研[

13]表明NF-κB信号参与重要的细胞过程,并且在不同病理条件下,通过抑制或激活其靶基因参与氧化应激和炎症相关机制,如肿瘤、免疫性疾病等。Wu[14]提出溴多巴胺和末端外结构域抑制剂可通过抑制癌转录因子治疗肿瘤,可通过抑制NF-κB为大肠癌潜在治疗提供理论基础。结直肠癌组织中NF-κB信号通路激活在肿瘤进展中起着关键作用,并且结肠癌患者的不良预后相关,这可能是结肠癌治疗靶[15]。Rong[16]发现MGP增加细胞内游离钙离子水平,促进NF-κB磷酸化,激活程序性细胞死亡配体1(PD-L1)表达,促进结直肠癌细胞中CD8+T细胞耗竭,导致大肠癌肝转移。Berkovich[17]通过分析结直肠癌患者、结肠腺瘤和炎症过程患者组织样本,结果表明NF-κB通路强烈参与结肠癌发展和转移过程,在良性息肉样病变中表达与炎症病因中表达相当,这表明NF-κB在炎症和腺体瘤早期发挥作用。Ma[18]表明趋化因子CCL3和受体CCR5与TRAF6和NF-κB表达呈正相关,并可通过TRAF6和NF-κB促进结直肠癌细胞增殖、侵袭和迁移。这与本研究结果一致,体外抑制HT29和SW480细胞NF-κB信号通路可抑制结直肠癌细胞增殖、迁移和侵袭,并且与CCR5、TRAF6和PI3K信号通路有关。

[

19]发现,与正常组织相比,TRAF6在多种肿瘤组织中的表达增加,过表达的TRAF6可赋予细胞癌变特征,包括维持增殖信号、抵抗细胞死亡和诱导血管生成。Zhu[20]提出,TRAF6高表达的结直肠癌患者预后生存率很低。另外,Garo[21]提出慢性炎症可以驱动肿瘤发展,微小RNA-146可靶向TRAF6调控大肠癌发生,临床前给予miR-146模拟物或小分子抑制TRAF6可改善结肠炎症和大肠癌。Li[22]发现环形RNA PTEN在结直肠癌中表达下调,可通过TRAF6竞争性结合,抑制Akt磷酸化,并调控炎症因子异常表达参与结直肠癌进展。由上可知TRAF6在结直肠癌表达上调,可能与促进炎症进展有关。但Wu[23]提出,TRAF6通过驱动自噬基因表达,发挥抑制上皮-间充质转化和大肠癌抑制过程,这与本研究结果相反,可能与TRAF6在不同肿瘤环境中激活不同下游通路有关。因此,将TRAF6作为结直肠癌治疗靶点,还需考虑其上下游调控靶点。

Nishikawa[

24]发现CCR5及其配体(CCL3、CCL4和CCL5)在结直肠癌细胞系中过度表达,CCR5抑制剂在体内可抑制间充质干细胞诱导的肿瘤生长,而且CCR5过度表达与结直肠癌患者预后差相关,因此作者提出血清CCL3和CCL4水平可能是预测结直肠癌患者预后生物标志物。CCR5基因在结直肠癌组织中表达显著上调,其高表达特性与患者预后不良相[25]。Gu[26]表明ARCR通过介导微小RNA-153-3p/CCR5调节轴,抑制M2巨噬细胞极化,抑制结直肠癌肿瘤生长和转移。上述研究提示,CCR5通过不同调控机制参与结直肠癌进展,本研究结果表明,CCR5是TRAF6下游调控基因,抑制CCR5可降低HT29细胞增殖、迁移和侵袭,并显著促进PTEN表达,这与前期研究结果一致。

PI3K信号通路在结直肠癌发生和发展中起着重要作用,Muzny[

27]提出,结直肠癌组织中PI3K通路异常表达,抑制PI3K通路可改善结直肠癌肿瘤进展。Mao[28]报道,莫西西汀(MOX)在体内外均显示出良好的抗胶质母细胞瘤作用,MOX可以诱导自噬停止,促进自噬启动,抑制细胞增殖,同时可以诱导抑制PI3K/Akt/mTOR信号通路,进而抑制结直肠癌进展,并抑制体内移植瘤的生长。Deng[29]表明岩藻多糖通过激活TLR4介导的PI3K/Akt/mTOR信号轴,增强巨噬细胞糖酵解并调节巨噬细胞分化为M1表型,改善了免疫抑制的肿瘤微环境,有利于提高结直肠癌对化疗的敏感度。

本研究结果表明,抑制NF-κB、TRAF6以及CCR5都会降低结直肠癌细胞中PI3K的表达,并与细胞增殖、迁移和侵袭有关,因此,PI3K通路在结直肠癌进展中发挥关键作用。PTEN是PI3K/Akt通路中的一种抑制剂,PTEN的缺失可激活PI3K而导致长期的肿瘤生长,在20%~40%的转移性结直肠癌患者中发现PTEN表达缺[

30],与本研究结论一致。

综上,本研究结果表明,结直肠癌细胞中存在NF-κB异常活化,后者可能通过上调TRAF6与CCR5的表达,抑制抑癌分子PTEN的活性,从而导致促癌分子PI3K及其通路的活性升高。

利益冲突

所有作者均声明不存在利益冲突。

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