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miR-200a-3p在胆囊癌中的表达及其作用与机制

  • 孔祥海
  • 胡敏
  • 王笛乐
  • 王李理
  • 何涛
华中科技大学同济医学院附属武汉中心医院 普通外科,湖北 武汉 430014

中图分类号: R735.8

最近更新:2021-09-07

DOI:10.7659/j.issn.1005-6947.2021.08.006

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摘要

背景与目的

miR-200a-3p参与了多种肿瘤的生物学过程的调控,但在不同肿瘤中起着不同的作用(促癌基因或抑癌基因)。目前,其在胆囊癌中的作用尚不清楚。因此,本研究探讨miR-200a-3p在胆囊癌中的表达及其对胆囊癌细胞生物学功能的影响与机制。

方法

采用qRT-PCR法测定32例胆囊癌及癌旁组织、胆囊癌细胞系(GBC-SD、SGC-996、NOZ)及正常人胆囊上皮细胞系HGBEC中miR-200a-3p的表达。采用Lipofectamine™ 3000试剂盒将GBC-SD及NOZ细胞系分别转染miR-200a-3p模拟物(miR-200a-3p过表达组)、miR-200a-3p抑制物序列(miR-200a-3p沉默组)及阴性对照序列(阴性对照组)。MTT实验测定细胞增殖能力,Transwell实验测定细胞侵袭能力,MiRBD/Targetscan7.2/starBase2.0/miRtarbase网站预测miR-200a-3p的下游靶基因,并采用荧光素酶实验验证。Western blot检测上述3组细胞中靶基因与上皮间质转化(EMT)相关分子蛋白(E-cadherin、vimentin)的表达。

结果

qRT-PCR结果显示,胆囊癌组织中miR-200a-3p表达量低于癌旁组织,所有胆囊癌细胞系中miR-200a-3p表达量低于正常人胆囊上皮系HGBEC(均P<0.05)。GBC-SD及NOZ细胞系转染后,与各自的阴性对照组比较,两种细胞的miR-200a-3p过表达组miR-200a-3p表达量明显升高、增殖与侵袭能力明显减弱,两种细胞的miR-200a-3p沉默组miR-200a-3p表达量明显降低、增殖与侵袭能力明显增强(均P<0.05)。在线网站预测显示,miR-200a-3p和Notch2存在潜在结合位点;荧光素酶实验显示,miR-200a-3p导致Notch2野生型质粒pmirGLO-Notch2-3'UT WT荧光素酶活性明显降低,而miR-200a-3p对Notch2突变型质粒pmirGLO-Notch2-3'UTR MUT的荧光素酶活性没有影响。Western blot结果显示,两种细胞的miR-200a-3p过表达组与各自的阴性对照组比较,E-cadherin蛋白表达量升高、vimentin蛋白与Notch2蛋白表达量降低,而3种蛋白在两种细胞的miR-200a-3p沉默组则呈相反的变化(均P<0.05)

结论

miR-200a-3p在胆囊癌中表达降低,并可能起了抑癌基因的作用,其抑制胆囊癌细胞增殖和侵袭的机制可能与靶向下调Notch2从而抑制EMT过程有关。

胆囊癌是一种来源于胆囊上皮的恶性肿瘤,约占全部胆道肿瘤的80%~95%[

1-2]。全球肿瘤流行病学调查显示,2018年约有22万例新发患者和超过15万例患者死于胆囊[3]。与其他消化道肿瘤相比,胆囊癌起病隐匿,早期可通过直接浸润、淋巴结和血液扩散转[4-5]。由于肿瘤筛查不足和缺乏特异性肿瘤标志物,大多数患者在确诊时已进入中晚期,5年生存率低于5%[6]。深入研究胆囊癌的发病机制对提高诊治水平具有重要的意义。microRNA(miRNA)是一种长度为17~25 nt的短链高度保守的非编码RNA,其主要通过与靶基因mRNA的3'-UTR端互补序列结合以降解或抑制靶基因mRNA而沉默基因表[7-8]。文[9]报道miRNA可通过调节下游特定靶基因抑制肿瘤细胞侵袭和增殖。miR-200a-3p是新鉴定的miRNA分子,基因位于22号染色体上,在非小细胞肺[10]、胃[11]、视网膜母细胞[12]、肾细胞[13]中发挥抑癌基因的作用,但是在卵巢[14]中却扮演癌基因的角色。尽管如此,miR-200a-3p在胆囊癌中的表达情况,及对增殖和侵袭的影响及机制鲜见报道。本研究旨在探讨胆囊癌患者癌组织和细胞系中miR-200a-3p表达情况及对细胞增殖和侵袭的影响,并探讨可能的机制。

1 材料与方法

1.1 临床组织标本采集

本研究纳入我院普外科于2016年1月—2020年12月收治并接受胆囊癌切除术的32例患者,其中男18例,女14例;平均年龄(58.9±5.0)岁。采集胆囊癌患者术后癌及癌旁组织并保存于-80 ℃冰箱待测。纳入标准:⑴ 通过病理和影像学诊断为胆囊癌的患者;⑵ 均接受胆囊癌切除术。排除标准:⑴ 存在其他部位的肿瘤患者;⑵ 临床检验资料不全者。本研究经我院伦理委员会批准并符合赫尔辛基宣言。

1.2 主要仪器和试剂

胆囊癌细胞系GBC-SD、SGC-996、NOZ,及正常人胆囊上皮细胞系HGBEC由华中科技大学同济医学院附属协和医院肝胆胰外科实验室赠予。Notch2、上皮间质转化(EMT)相关分子(E-cadherin、vimentin、GAPDH一抗和HRP标记的山羊抗小鼠IgG二抗购自美国Abcam公司。RIPA试剂盒、BCA蛋白试剂盒、ECL试剂盒、胰蛋白酶和Lipofectamine™ 3000转染试剂购自美国Thermo Scientific公司。TransScript II Green两步法qRT-PCR SuperMix(AQ301-01)和TransScript Green miRNA两步法qRT-PCR SuperMix(AQ202-01)试剂盒购自广州锐博生物公司。MTT细胞增殖检测试剂盒购自上海碧云天生物技术公司。Transwell试剂盒购自美国Gibco公司。RT-PCR仪购自美国BD公司。上海吉玛公司负责miR-200a-3p模拟物序列、miR-200a-3p抑制物序列及阴性对照序列的设计和合成。

1.3 细胞培养及分组

胆囊癌细胞系(GBC-SD、SGC-996、NOZ)及正常人胆囊上皮系HGBEC在含有10%FBS、青霉素-链霉素DMEM培养基中培养,在37 ℃和5%CO2的加湿培养箱中培养。细胞转染采用Lipofectamine™ 3000试剂盒,对GBC-SD及NOZ细胞系按试剂盒说明书转染miR-200a-3p模拟物(miR-200a-3p过表达组)、miR-200a-3p抑制物(miR-200a-3p沉默组)、阴性对照序列(阴性对照组),转染成功后行后续实验。

1.4 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)实验

使用TRIzol试剂盒提取细胞系、癌和癌旁组织中的总RNA,通过紫外分光光度计测定其浓度和纯度,然后按照试剂盒指导进行逆转录。反应条件:95 °C 15 min;95 °C 15 s;58 °C 30 s;72 °C 15 min,共35个循环。每个标本设3个复孔,每个标本测定3次,以U6作为miR-200a-3p内参。使用2-ΔΔct法计算miR-200a-3p的相对表达量。miR-200a-3p引物序列正向引物:5'-TAA CAC TGT CTG GTA ACG ATGT-3',逆向引物:5'-CAT CTT ACC GGA CAG TGC TGG A-3'。U6引物序列正向引物:5'-CTC GCT TCG GCA GCA CA-3',逆向引物:5'-AAC GCT TCA CGA ATT TGC GT-3'。

1.5 细胞增殖测定

采用MTT实验测定细胞增殖能力,将转染24 h的3组细胞以4×106个细胞/孔置于96孔板中,置入后0、24、48、72 h每孔加入10 μL MTT溶液和90 μL DMEM培养液,然后37 ℃下培养2 h后,通过酶标仪测量每孔在490 nm处的光密度值A490 nm

1.6 细胞侵袭测定

将转染24 h的3组细胞以 5×104个细胞/孔置于6孔板上。将细胞和 DMEM培养液(200 μL)置于上隔室,将500 μL含20% FBS的DMEM培养液置于下隔室。37 ℃培养48 h后,擦去未能穿膜的基质和细胞。漂洗3次,多聚甲醛固定10 min。穿膜的侵袭细胞用0.5%结晶紫染色,并在200×视野下用显微镜进行计数分析。

1.7 Western blot检测

收集各组培养细胞,RIPA裂解提取总蛋白,BCA法测定蛋白浓度。总蛋白通过12%SDS-PAGE分离,转膜至PVDF膜上。加入Notch2(1∶300)、E-cadherin(1∶200)、vimentin(1∶300)及GAPDH(1∶500)一抗并在4 ℃下孵育过夜,漂洗后加入辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔二抗(1∶500)在室温下孵育1 h。ECL化学发光试剂盒用于检测目标蛋白条带,扫描条带灰度,通过Quantity One计算其灰度值。目的蛋白相对表达量=目的蛋白条带灰度值/GAPDH条带灰度值。

1.8 miR-200a-3p靶基因预测和验证

MiRBD/Targetscan7.2/starBase2.0/miRtarbase网站用于预测miR-200a-3p的下游靶基因。采用荧光素酶实验验证miR-200a-3p的靶基因,使用Lipofectamine™ 3000试剂盒将miR-200a-3p模拟物分别与PmirGLO-Notch2-3'UTR野生型质粒(WT)、pmirGLO-Notch2-3'UTR突变型质粒(MUT)共转移到HEK293T细胞中。荧光素酶活性用萤火虫荧光素酶活性检测试剂盒进行检测。

1.9 统计学处理

本研究采用SPSS 20.0进行数据分析,GraphPad 7进行绘图。多组比较通过方差分析进行,在方差分析有意义的基础上采用LSD-t检验行两组间比较,多个时间点的数据通过重复测量方差比较,P<0.05为差异有统计学意义。

2 结 果

2.1 miR-200a-3p在胆囊癌组织及细胞系中的表达

胆囊癌组织中miR-200a-3p表达量低于癌旁组织[(1.63±0.65)vs.(4.38±1.13),P<0.05](图1A);胆囊癌细胞系GBC-SD、SGC-996、NOZ中miR-200a-3p表达量分别为1.18±0.06、1.06±0.05、0.87±0.04,正常人胆囊上皮系HGBEC中miR-200a-3p表达量为3.54±0.12,胆囊癌细胞系GBC-SD、SGC-996、NOZ中miR-200a-3p表达量低于正常人胆囊上皮系HGBEC(均P<0.05)(图1B)。

图1 qRT-PCR检测miR-200a-3p的表达 A:miR-200a-3p在胆囊癌组织与癌旁组织中的表达;B:miR-200a-3p在胆囊癌细胞系与胆囊上皮细胞系中的表达

Figure 1 Expression of miR-200a-3p determined by qRT-PCR A: Expressions of miR-200a-3p in gallbladder cancer and adjacent tissues; B: Expressions of miR-200a-3p in gallbladder cancer cell lines and normal human gallbladder epithelial cell line

2.2 转染效率检测

GBC-SD及NOZ细胞系经转染miR-200a-3p模拟物及抑制物序列后,行qRT-PCR检测,结果显示,两种细胞的miR-200a-3p过表达组miR-200a-3p表达量均高于各自的阴性对照组(均P<0.05),两种细胞的miR-200a-3p沉默组miR-200a-3p表达量均低于各自的阴性对照组(均P<0.05),提示转染成功,可行下步实验(图2)。

图2 qRT-PCR检测转染效率

Figure 2 Determination of transfection efficiency by qRT-PCR

2.3 miR-200a-3p对胆囊癌细胞增殖的影响

MTT实验显示,转染24 h后,两种细胞各组的A490 nm值差异无统计学意义(均P>0.05),转染48、72及96 h后,两种细胞的miR-200a-3p过表达组A490 nm值均明显低于各自的阴性对照组(均P<0.05),两种细胞的miR-200a-3p沉默组A490 nm值均明显高于各自的阴性对照组(均P<0.05)(图3)。

图3 miR-200a-3p对胆囊癌细胞增殖的影响

Figure 3 Influence of miR-200a-3p on proliferation of gallbladder cancer cells

2.4 miR-200a-3p对胆囊癌细胞侵袭能力的影响

GBC-SD及NOZ细胞系经转染miR-200a-3p模拟物及抑制物序列后,Transwell实验显示,两种细胞的miR-200a-3p过表达组侵袭细胞数均少于各自的阴性对照组(均P<0.05),两种细胞的miR-200a-3p沉默组侵袭细胞数均多于各自的阴性对照组(均P<0.05)(图4)。

图4 miR-200a-3p对胆囊癌细胞侵袭能力的影响

Figure 4 Influence of miR-200a-3p on invasion abilities of gallbladder cancer cells

2.5 miR-200a-3p靶基因预测

在线预测网站(Targetscan 7.2/starBase 2.0/miRBD/miRtarbase)检索分析显示miR-200a-3p和Notch2存在潜在结合位点(图5A)。荧光素酶实验发现,miR-200a-3p导致Notch2野生型质粒pmirGLO-Notch2-3'UT WT荧光素酶活性明显降低,而miR-200a-3p对Notch2突变型质粒pmirGLO-Notch2-3'UTR MUT的荧光素酶活性没有影响(图5B)。

图5 miR-200a-3p的靶基因预测 A:在线网站预测miR-200a-3p与Notch2存在靶向结合位点;B:荧光素酶实验验证Notch2为miR-200a-3p的靶基因

Figure 5 Prediction of target genes of miR-200a-3p A: Binding sites between miR-200a-3p Notch2 predicted by online website analysis; B: Luciferase assay verification showing Notch2 is the target gene of miR-200a-3p

2.6 miR-200a-3p表达与Notch2及EMT相关分子蛋白表达的关系

GBC-SD及NOZ细胞系经转染miR-200a-3p模拟物及miR-200a-3p抑制物序列后,两种细胞的miR-200a-3p过表达组E-cadherin蛋白表达量高于各自的阴性对照组、vimentin蛋白表达量低于各自的阴性对照组、Notch2蛋白表达量低各自的于阴性对照组(均P<0.05)。两种细胞的miR-200a-3p沉默组E-cadherin蛋白表达量低于各自的阴性对照组、vimentin蛋白表达量高于各自的阴性对照组、Notch2蛋白表达量高于各自的阴性对照组(均P<0.05)(图6)。

图6 miR-200a-3p的表达对Notch2EMT相关分子蛋白表达的影响

Figure 6 Effects of miR-200a-3p on the expressions of Notch2 protein and EMT-associaed molecules

3 讨 论

胆囊癌患者病死率高的原因主要在于其起病隐匿,无明显早期临床特征,易于忽视;已诊断的胆囊癌常处于晚期,不适合手术,放化疗效果差;胆囊癌患者缺乏有效的筛查手[

15-16]。临床上缺乏针对胆囊癌特异性的肿瘤标志物,因此寻找对胆囊癌具有特异性的肿瘤标志物显得尤为重要。

miRNA是不具有编码蛋白质功能的短链RNA,其主要功能是与靶基因mRNA的3'-UTR末端结合而调控下游靶基因的转录,起到抑制或降解靶基因的作[

17]。miR-200家族共有5组成员,包括miR-200a家族、miR-200b家族、miR-200c家族、miR-429家族及miR-141家[18-19]。miR-200a-3p属于miR-200家族,基因定位于染色体22q21.12上,在炎症反[20]、心肌缺血再灌注损[21]和肿瘤中发挥重要的调控作用。在脑损伤诱导的脓毒症中,miR-200a-3p可通过诱导活性氧促进炎症反[20]。依据miR-200a-3p结合的靶标分子功能不同,miR-200a-3p在不同的肿瘤中发挥抑癌或促癌作用。在非小细胞肺[10]中,miR-200a-3p呈低表达,且miR-200a-3p低表达与预后差相关,上调miR-200a-3p可抑制胰岛素受体底物2(insulin receptor substrate 2,IRS2)表达,进而抑制细胞增殖、迁移及侵袭过程。在胃[11]中,miR-200a-3p起抑癌基因的作用,miR-200a-3p可靶向调节Krüppel样因子12(KLF12)表达,且上调miR-200a-3p可抑制胃癌细胞增殖和侵袭,并诱导细胞周期停滞。视网膜母细胞[12]中,miR-200a-3p可通过介导PI3K-Akt/MAPK-ERK信号通路抑制细胞增殖、侵袭及EMT过程。在肾细胞[13]中,miR-200a-3p在癌组织中呈低表达,过表达miR-200a-3p通过靶向结合E3泛素蛋白连接酶,抑制肾细胞癌细胞增殖及迁移过程,并诱导细胞凋亡。然而,miR-200a-3p在卵巢[14]却是促癌基因,miR-200a-3p高表达与肿瘤大小、转移及TNM分期相关,并可促进细胞增殖、克隆形成及侵袭过程。本研究发现miR-200a-3p在胆囊癌组织中表达水平较正常癌旁组织显著降低,提示miR-200a-3p可能发挥抑癌基因功能。为探究miR-200a-3p参与胆囊癌发病的分子机制,在体外细胞实验中过表达及沉默胆囊癌细胞系(GBC-SD、NOZ)中miR-200a-3p表达水平,进行细胞增殖及侵袭实验,发现上调miR-200a-3p表达后,GBC-SD及NOZ细胞系细胞增殖能力受抑制,侵袭细胞数减少;反之,下调miR-200a-3p表达后,可促进GBC-SD细胞系细胞增殖能力,侵袭细胞数增加。表明miR-200a-3p在胆囊癌中可能扮演抑癌基因的角色。这与非小细胞肺[10]、胃[11]、视网膜母细胞[12]、肾细胞[13]中的结果一致,但与卵巢[14]中的结果相反。可能与肿瘤的异质性及与miR-200a-3p结合的靶基因所扮演的不同功能有关。

EMT是指上皮细胞失去原有极性,从而获得抗凋亡和较强的迁移及侵袭能力,进而转化为间质细胞的过程,在上皮源性肿瘤中发挥重要作[

22-23]。本研究发现上调miR-200a-3p后,代表上皮的标志物E-cadherin蛋白表达水平上调,而代表间质的标志物vimentin却下调表达,抑制miR-200a-3p表达后,E-cadherin蛋白下调表达,而vimentin上调表达,提示miR-200a-3p过表达可抑制EMT过程,这可能是miR-200a-3p发挥抑癌作用的机制之一。

Notch2是一种编码跨膜蛋白的基因,作为膜结合配体的受体并与相邻细胞发生相互作[

24]。Notch2的改变通常与癌症特别是膀胱尿路上皮癌密切相[25]。Notch信号通路广泛存在于无脊椎动物和脊椎动物中,可调节细胞增殖、凋亡、分化及组织器官发育过[26]。Notch可通过PI3K/Akt及Wnt/β-catenin信号通路发挥促进细胞增殖和分化、抗凋亡的作[27]。Notch通路在EMT中起关键作用,Notch2是Notch信号通路中的重要因子之一,在卵巢上皮癌中,Notch2分子被外泌体miR-34b分子调控,并参与卵巢癌的EMT过[28]。研究发现miR-146a-5p通过靶向Notch2介导食管鳞状细胞癌的EMT过[29]。本研究通过在线网站预测和荧光素酶实验发现miR-200a-3p靶基因是Notch2。对胆囊癌细胞系GBC-SD及NOZ转染miR-200a-3p模拟物序列上调miR-200a-3p表达后,Notch2蛋白表达受抑制。反之,转染miR-200a-3p抑制物序列下调miR-200a-3p表达后,Notch2蛋白表达量上调,这进一步验证了Notch2为miR-200a-3p的靶标分子。在本研究发现上调miR-200a-3p表达后,Western blot结果显示EMT相关蛋白表达量发生变化,且Notch2为miR-200a-3p作用的靶基因,提示上调miR-200a-3p表达可能通过下调Notch2分子抑制EMT过程,进而发挥抑癌功能。

由于本研究是在体外细胞系中的初步研究,尚存在一定不足之处,比如:上调miR-200a-3p同时上调Notch2对癌细胞表型及下游分子改变的影响,miR-200a-3p表达与胆囊癌患者术后预后的关系等,都值得进一步研究。

综上,miR-200a-3p可抑制胆囊癌细胞增殖和侵袭过程,发挥抑癌基因功能,机制可能与下调Notch2及抑制EMT过程有关。

参考文献

1

Shukla SK, Singh G, Shahi KS, et al. Staging, treatment, and future approaches of gallbladder carcinoma[J]. J Gastrointest Cancer, 2018, 49(1):9-15. doi: 10.1007/s12029-017-0036-5. [百度学术

2

Pang L, Zhang Y, Wang Y, et al. Pathogenesis of gallbladder adenomyomatosis and its relationship with early-stage gallbladder carcinoma: an overview[J]. Braz J Med Biol Res, 2018, 51(6):e7411. doi: 10.1590/1414-431x20187411. [百度学术

3

Bray F, Ferlay J, Soerjomataram I, et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2018, 68(6):394-424. doi: 10.3322/caac.21492. [百度学术

4

Kim BH, Kwon J, Chie EK, et al. Adjuvant chemoradiotherapy is associated with improved survival for patients with resected gallbladder carcinoma: a systematic review and meta-analysis[J]. Ann Surg Oncol, 2018, 25(1):255-264. doi: 10.1245/s10434-017-6139-1. [百度学术

5

Wang N, Xiang X, Chen K, et al. Targeting of NT5E by miR-30b and miR-340 attenuates proliferation, invasion and migration of gallbladder carcinoma[J]. Biochimie, 2018, 146:56-67. doi: 10.1016/j.biochi.2017.10.027. [百度学术

6

Neyaz A, Husain N, Gupta S, et al. Investigation of targetable predictive and prognostic markers in gallbladder carcinoma[J]. J Gastrointest Oncol, 2018, 9(1):111-120. doi: 10.21037/jgo.2017.10.02. [百度学术

7

Agarwal V, Subtelny AO, Thiru P, et al. Predicting microRNA targeting efficacy in Drosophila[J]. Genome Biol, 2018, 19(1):152. doi: 10.1186/s13059-018-1504-3. [百度学术

8

Gebert LFR, MacRae IJ. Regulation of microRNA function in animals[J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2019, 20(1):21-37. doi: 10.1038/s41580-018-0045-7. [百度学术

9

Achkar NP, Cambiagno DA, Manavella PA. miRNA Biogenesis: A Dynamic Pathway[J]. Trends Plant Sci, 2016, 21(12):1034-1044. doi: 10.1016/j.tplants.2016.09.003. [百度学术

10

Tan T, Xu XH, Lu XH, et al. miR-200a-3p suppresses the proliferation, migration and invasion of non-small cell lung cancer through targeting IRS2[J]. Eur Rev Med Pharmacol Sci, 2020, 24(2):712-720. doi: 10.26355/eurrev_202001_20050. [百度学术

11

Jia C, Zhang Y, Xie Y, et al. miR-200a-3p plays tumor suppressor roles in gastric cancer cells by targeting KLF12[J]. Artif Cells Nanomed Biotechnol, 2019, 47(1):3697-3703. doi: 10.1080/21691401.2019.1594857. [百度学术

12

Zhao H, Wan J, Zhu Y. Carboplatin Inhibits the Progression of Retinoblastoma Through IncRNA XIST/miR-200a-3p/NRP1 Axis[J]. Drug Des Devel Ther, 2020, 14:3417-3427. doi: 10.2147/DDDT.S256813. [百度学术

13

Ding M, Sun X, Zhong J, et al. Decreased miR-200a-3p is a key regulator of renal carcinoma growth and migration by directly targeting CBL[J]. J Cell Biochem, 2018, 119(12):9974-9985. doi: 10.1002/jcb.27326. [百度学术

14

Shi C, Yang Y, Zhang L, et al. MiR-200a-3p promoted the malignant behaviors of ovarian cancer cells through regulating PCDH9[J]. Onco Targets Ther, 2019, 12:8329-8338. doi: 10.2147/OTT.S220339. [百度学术

15

Pandey A, Stawiski EW, Durinck S, et al. Integrated genomic analysis reveals mutated ELF3 as a potential gallbladder cancer vaccine candidate[J]. Nat Commun, 2020, 11(1):4225. doi: 10.1038/s41467-020-17880-4. [百度学术

16

Sahara K, Tsilimigras DI, Kikuchi Y, et al. Defining and predicting early recurrence after resection for gallbladder cancer[J]. Ann Surg Oncol, 2021, 28(1):417-425. doi: 10.1245/s10434-020-09108-y. [百度学术

17

Tiwari PK. Epigenetic biomarkers in gallbladder cancer[J]. Trends Cancer, 2020, 6(7):540-543. doi: 10.1016/j.trecan.2020.03.003. [百度学术

18

Pan Y, Liang H, Chen W, et al. MicroRNA-200b and microRNA-200c promote colorectal cancer cell proliferation via targeting the reversion-inducing cysteine-rich protein with Kazal motifs[J]. RNA Biol, 2015, 12(3):276-289. doi: 10.1080/15476286.2015.1017208. [百度学术

19

Hu X, Macdonald DM, Huettner PC, et al. A miR-200 microRNA cluster as prognostic marker in advanced ovarian cancer[J]. Gynecol Oncol, 2009, 114(3):457-464. doi: 10.1016/j.ygyno.2009.05.022. [百度学术

20

Yu J, Chen J, Yang H, et al. Overexpression of miR200a3p promoted inflammation in sepsisinduced brain injury through ROSinduced NLRP3[J]. Int J Mol Med, 2019, 44(5):1811-1823. doi: 10.3892/ijmm.2019.4326. [百度学术

21

Chang H, Li ZB, Wu JY, et al. Circ-100338 induces angiogenesis after myocardial ischemia-reperfusion injury by sponging miR-200a-3p[J]. Eur Rev Med Pharmacol Sci, 2020, 24(11):6323-6332. doi: 10.26355/eurrev_202006_21530. [百度学术

22

Li X, Teng S, Zhang Y, et al. TROP2 promotes proliferation, migration and metastasis of gallbladder cancer cells by regulating PI3K/AKT pathway and inducing EMT[J]. Oncotarget, 2017, 8(29):47052. doi: 10.18632/oncotarget.16789. [百度学术

23

Nakada S, Kuboki S, Nojima H, et al. Roles of Pin1 as a key molecule for EMT induction by activation of STAT3 and NF-κB in human gallbladder cancer[J]. Ann Surg Oncol, 2019, 26(3):907-917. doi: 10.1245/s10434-018-07132-7. [百度学术

24

Song X, Hu Y, Li Y, et al. Overview of current targeted therapy in gallbladder cancer[J]. Signal Transduct Target Ther, 2020, 5(1):230. doi: 10.1038/s41392-020-00324-2. [百度学术

25

Kwon W, Kim H, Han Y, et al. Role of tumour location and surgical extent on prognosis in T2 gallbladder cancer: an international multicentre study[J]. Br J Surg, 2020, 107(10):1334-1343. doi: 10.1002/bjs.11618. [百度学术

26

Yang X, Duan B, Zhou X. Long non-coding RNA FOXD2-AS1 functions as a tumor promoter in colorectal cancer by regulating EMT and Notch signaling pathway[J]. Eur Rev Med Pharmacol Sci, 2017, 21(16):3586-3591. [百度学术

27

Meurette O, Stylianou S, Rock R, et al. Notch activation induces Akt signaling via an autocrine loop to prevent apoptosis in breast epithelial cells[J]. Cancer Res, 2009, 69(12):5015-5022. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-08-3478. [百度学术

28

Lu S, Liu W, Shi H, et al. Exosomal miR34b inhibits proliferation and the epithelialmesenchymal transition by targeting Notch2 in ovarian cancer[J]. Oncol Lett, 2020, 20(3):2721-2728. doi: 10.3892/ol.2020.11837. [百度学术

29

Wang C, Zhang W, Zhang L, et al. miR-146a-5p mediates epithelial-mesenchymal transition of oesophageal squamous cell carcinoma via targeting Notch2[J]. Br J Cancer, 2016, 115(12):1548-1554. doi: 10.1038/bjc.2016.367. [百度学术